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2013醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)輔導(dǎo):淋巴細(xì)胞的保存和活力測(cè)定

  一、分離細(xì)胞的保存

  在某些情況下,分離所得細(xì)胞需要加以保存,否則活力迅速下降,甚至死亡。

  (一)短期保存技術(shù)

  將分離到的細(xì)胞用適量含10%~20%滅活小牛血清的Hanks、Tc-199、RPMI1640或其他培養(yǎng)液稀釋重懸。所用培養(yǎng)液要求等滲,具緩沖作用,并對(duì)細(xì)胞無(wú)毒性。通常置4℃保存較好,可減低細(xì)胞代謝活動(dòng)。要注意不要迅速改變細(xì)胞所處的溫度,以免造成細(xì)胞“溫度”休克。

  (二)長(zhǎng)期冷凍保存技術(shù)

  利用液氮深低溫(-196℃)環(huán)境保存細(xì)胞,是當(dāng)前世界上通用的細(xì)胞長(zhǎng)期保存技術(shù)。其原理在于深低溫環(huán)境可中斷細(xì)胞的代謝,但在降溫過(guò)程由于冰晶的形成和滲透壓的改變均可導(dǎo)致細(xì)胞的損傷和部分死亡,所以在冷凍過(guò)程中一定要加用冷凍保護(hù)劑,常用的保護(hù)劑為二甲亞砜(dimethylsulfoxide,DMSO)。冷凍時(shí)的降溫速度和細(xì)胞解凍時(shí)的升溫速度對(duì)細(xì)胞活力的保存有很大影響。條件合適時(shí),凍存細(xì)胞一旦復(fù)蘇,恢復(fù)37℃培養(yǎng),其形態(tài)和代謝活動(dòng)均可恢復(fù)正常。操作的原則是先對(duì)需凍存的細(xì)胞作活細(xì)胞計(jì)數(shù),低速離心后,取沉積細(xì)胞用含10%二甲亞砜的小牛血清配制成適當(dāng)濃度的細(xì)胞懸液,分裝于凍存管內(nèi),速即放入降溫過(guò)渡站中,避免二甲亞砜對(duì)細(xì)胞的損傷。繼而進(jìn)行降溫冷凍,目前常用兩步降溫法,即迅速降溫至一選擇好的臨界溫作為過(guò)渡站,如-80℃低溫冰箱過(guò)夜,或在液氮罐液面以上的一層空間放置片刻,然后再放入液氮中。如需復(fù)蘇細(xì)胞,則需迅速解凍以恢復(fù)細(xì)胞的活力,要求在20s以內(nèi)完全融化。將凍存管自液氮中取出,立即放入40℃溫水中,融化后即從水中取出,吸出細(xì)胞懸液,加入10倍的培養(yǎng)液中混勻,繼而低速離心,盡快洗去保護(hù)劑,再懸于新培養(yǎng)液中,計(jì)數(shù)并檢查細(xì)胞活力,然后置37℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。

  二、細(xì)胞活力測(cè)定

  細(xì)胞活力常用百分比表示,活力的大小對(duì)試驗(yàn)結(jié)果有很大影響。細(xì)胞活力的測(cè)定有許多方法,最簡(jiǎn)便常用的方法是臺(tái)盼藍(lán)(trypanblue)染色法。臺(tái)盼藍(lán)又稱錐藍(lán),是一種陰離子型染料,這種染料不能透過(guò)活細(xì)胞正常完整的細(xì)胞膜,故活細(xì)胞不著色,但死亡細(xì)胞的細(xì)胞膜通透性增加,可使染料通過(guò)細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),使死細(xì)胞著色呈藍(lán)色。

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