瑞氏染色法染液的配制
(1) 瑞氏染液配制:
瑞氏染料 830gm 或 1g
甲醇( AR ) 500ml 或 600ml
先稱干燥(事先放入溫箱干燥過夜)瑞氏染料放置乳缽內, 用乳棒輕輕 敲碎染料成粉末,再行研磨至聽不到 研芝麻聲 即呈細粉末,加少許甘油或甲醇溶解研磨,使染料在乳缸內顯“一面鏡”光澤,而無染料粉粒沉著,再加較多量甲醇研磨呈一面鏡光亮,靜置片刻,將上層液體倒入 一 清潔儲存瓶內(最好用甲醇空瓶),再加甲醇研磨,重復數次,直至乳缽內染料及甲醇用完為止,搖勻,密封瓶口,存室溫暗處,儲存愈久,則染料溶解、分解就越好,一般儲存 3 個月以上為佳。
(2) 緩沖液:
1) 緩沖液作用:染色對氫離子濃度是十分敏感的,據觀察 pH 值的改變,可使蛋白質與染料形成的化合物重新離解。 緩沖液須保持 一定的 pH 使染色穩定, PBS 的 pH 一般在 6.4~6.8 ,偏堿性染料可與緩沖液中 酸基起 中和作用,偏酸性染料則與緩沖液中的堿基起中和作用,使 pH 恒定。
2) 緩沖液配制( pH6.4~6.8 ,弱酸性):
配方 1 : 配方 2 :
1% KH2PO4 30ml M/15 KH2PO4 73.5 ml
1% Na2HPO4 20ml M/15 Na2HPO4 26.5ml
H2O( 新鮮 ) 加至 1000ml
置室溫黑暗處,瓶口密封,防止霉菌污染,如有污染則應報廢。
瑞氏染色法的基本步驟
1.滴加瑞氏吉姆薩A液(約0.5ml-0.8ml)涂片上,并讓染液覆蓋整個標本染色1min;
2. 再將瑞氏吉姆薩B液加于A液上面(滴加量為A液的2-3倍),以嘴或洗耳球吹出微風使液面產生漣漪狀,使兩液充分混合,染色3-10min.(染血片時間可略短,染骨髓片時間應視細胞量多少而異)
3.水洗(沖洗時不能先倒掉染液,應以流水沖去,以防有沉渣沉淀在標本上),干燥、鏡檢。
瑞氏染色法操作時的注意事項
1. 染色時間須視何種標本,涂片厚度,有核細胞多少,何種細胞及室溫等而定;通常染血液涂片時滴加B液后染2-4分鐘,染骨髓片則應不少于8分鐘;氣溫較低時,可適當延長染色時間。染色結果如出現嗜酸性粒細胞變堿,則考慮是否染色時間太長所致。
2.做骨髓涂片時,因為骨髓纖維蛋白含量較高,凝固較快,所以涂片過程要快。骨髓不可用草酸鹽抗凝,否則會使血細胞核變形,核染色質致密,胞漿空泡形成,出現草酸鹽結晶。
3.染液量需充足,勿使染液蒸發干燥,以防染料沉著于涂片上。
4.做細胞染色時,當天氣寒冷或濕度較大時,應于37℃溫箱中保溫促干,以免細胞變形縮小或在染色時脫片。
5.染料放置時間越長,染色效果越好。
6. 本試劑應由專業人員使用。
血細胞染色—吉姆薩染色法
吉姆薩(Giemsa)染色法吉姆薩染液由天青,伊紅組成。染色原理和結果與瑞特染色法基本相同。嗜酸性顆粒為堿性蛋白質,與酸性染料伊紅結合,染粉紅色,稱為嗜酸性物質;細胞核蛋白和淋巴細胞胞漿為酸性,與堿性染料美藍或天青結合,染紫藍色,稱為嗜堿性物質;中性顆粒呈等電狀態與伊紅和美藍均可結合,染淡紫色,稱為中性物質。
PH對細胞染色有一些影響。細胞里各種成分均不蛋白質,因為蛋白質系兩性電解質,帶電荷隨溶液PH而定,在偏酸性環境里正電荷增多,易和伊紅結合,染色為偏紅;在偏堿性環境里負電荷增多,易和美藍或天青結合,染色偏藍。所以細胞染色對氫離子濃度十分敏感,染色用正經片一定清潔,要無酸堿污染。配制頊特液一定用優質甲醇,稀釋染色一定用緩沖液,沖洗一定用水應近中性,不然可導致各種細胞染色反應異常,以致于識別困難,甚至造成錯誤的。
一般性操作技術血涂片制備;細胞染色;顯微檢查;血液病診斷;染色不良。
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